Herstellung des Ammoniumsulfat-PCR-Puffers

Diese Anleitung beschreibt die Herstellung eines Ammoniumsulfat-PCR-Puffers mit einer festgelegten Molarität für den Laborgebrauch.

PCR-Puffer mit Ammoniumsulfat wird häufig eingesetzt, um die Primerspezifität zu erhöhen und die Aktivität der DNA-Polymerase zu optimieren.

PCR-Puffer mit Ammoniumsulfat – Zusammensetzung

NameFormelKonzentrationCAS
Ammoniumsulfat(NH₄)₂SO₄20 mM7783-20-2
Tris-Cl (pH 8.8)C₄H₁₁NO₃75 mM77-86-1
MagnesiumchloridMgCl₂2 mM7791-18-6
Triton X-100C₃₄H₆₂O₁₁0.1% (w/v)9002-93-1

Sterilisation und Lagerung

  • Sterilisation: Filtration mit 0.22 μm.
  • Lagerung: Aliquotieren und bei −20 °C lagern.

Hinweise

  • Der pH-Wert des Puffers liegt gewöhnlich bei 8.0–9.5 und wird mit Tris-Cl eingestellt.
  • Triton X-100 ist sehr viskos; eine niedrig konzentrierte Stammlösung verwenden oder durch Tween 20 ersetzen.
  • Bei Verwendung von Ammoniumsulfat ist die MgCl₂-Konzentration typischerweise höher (2.0 ± 0.5 mM).
  • NH₄⁺ und Mg²⁺ wirken antagonistisch; Puffer mit Ammoniumsulfat zeigen über verschiedene Mg²⁺-Konzentrationsbereiche hinweg eine höhere Primerspezifität.
  • Ammoniumionen destabilisieren Wasserstoffbrücken bei Fehlpaarungen zwischen Primer und Matrize und erhöhen dadurch die Reaktionsspezifität.
  • Der optimale PCR-Puffer hängt vom Typ der DNA-Polymerase ab; die Empfehlungen des Lieferanten beachten.
  • Die direkte Verwendung von wasserfreiem MgCl₂ ist exotherm; in kleinen Portionen zu einem Teil des Lösungsmittelvolumens geben.
Vorschau
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